【佳學基因檢測】FISH基因檢測中的探針類型選擇
FISH基因檢測中的探針選擇
根據(jù)《不同基因檢測技術的敏感性與特異性》,F(xiàn)ISH 技術中的一個重要環(huán)節(jié)是如何選擇合適的探針,這決定了患者的測試價值。 每種類型的 FISH 探針都可以檢測不同的染色體畸變。 圖 1A-G 顯示了不同類型 FISH 探針的實際使用示例。 位點特異性探針可用于評估靶標的額外拷貝數(shù)。 建立擴增狀態(tài)需要兩個不同標記的基因座、目標區(qū)域和對照區(qū)域。 擴增的決定性因素是比率參數(shù)。 它是紅色標記的測試基因信號總數(shù)除以綠色標記的對照序列信號總數(shù)的商。 賊小結果 2.0 證實擴增。
FISH技術在實體瘤基因檢測中的應用
腫瘤類型 | 診斷價值 | 預后價值 | 預測值 | 可用的 FISH 探針 |
---|---|---|---|---|
肺癌 ALK、 ROS1 |
不 | 是的 |
是的 克唑替尼 |
? Vysis ALK 分離 FISH 探針試劑盒 (Abbott Molecular) ? Vysis 6q22 ROS1分離 FISH 探針 (Abbott Molecular) ? ROS1 分離 FISH 探針 (Empire Genomics) |
膠質瘤 1p19q 共同缺失 |
是的 | 是的 | 不 | ? Vysis LSI 1p36 SpectrumOrange/1q25 SpectrumGreen 探針和 Vysis LSI 19q13 SpectrumOrange/19p13 SpectrumGreen 探針 (Abbott Molecular) |
乳腺癌 HER2 |
不 | 是的 |
是的 曲妥珠單抗、 拉帕替尼 |
? PathVysion HER-2 DNA 探針試劑盒 (Abbott Molecular) |
卵巢癌 CCNE1 |
不 | 是的 |
是 鉑類藥物 |
? CCNE1/CEN19p FISH 探針 (Abnova) |
尤文肉瘤 EWSR1 |
是的 | 是的 | 不 | ? Vysis EWSR1 分離 FISH 探針試劑盒 (Abbott Molecular) |
滑膜肉瘤 SS18 |
是的 | 是的 | 不 | ? Vysis SS18 分離 FISH 探針套件 (Abbot Molecular) |
隆突性皮膚纖維肉瘤 COL1A1-PDGFB |
不 | 是的 |
是 TKI (伊馬替尼) |
? SPEC COL1A1-PDGFB 雙色雙融合 (ZytoLight) |
位點特異性探針還可用于評估基因組中染色體序列的丟失。 如《不同基因檢測技術的敏感性與特異性》所述,探針由兩個不同標記的區(qū)域組成:目標基因座和對照基因座。 當具有主導控制基因座信號的細胞數(shù)量超過具有主導靶基因座信號的細胞數(shù)量時,報告缺失。 應分別計算每個組織學樣本的截止值。
與上述類型的探針不同的是用于檢測染色體重排的探針。 這些探針之一,即雙色探針,包含兩個基因靶標。 由于這些靶標內部的斷裂以及它們的兩半之間的交換,出現(xiàn)了兩次融合,這是染色體水平上易位的證據(jù)。 在分裂型探針的情況下,兩種對比熒光染料與同一基因的兩個遠端互補,與目標賊常見的斷點保持密切關系。
FISH 方法的驗證
使用 FISH 檢測對淋巴結和實體瘤獲得性染色體異常進行染色體研究的標準和指南是代表美國醫(yī)學遺傳學和基因組學學院 (ACMG) 實驗室質量高效委員會為臨床實驗室遺傳學家制定的,自發(fā)布以來一直沒有改變。 賊后一次修訂于 2018 年。 先進次計數(shù)評估的結果應由第二位診斷醫(yī)生進行驗證,以確保再現(xiàn)性、提高 FISH 結果的分析高效性并降低錯誤風險。 此外,原位雜交過程的自動化和先進的軟件可以顯著提高工作質量。 據(jù)估計,F(xiàn)ISH 測試中正常結果的上限應通過計算在代表性正常對照樣品中檢測到的探針信號模式的 95% 置信水平來確定。 作為良好實踐,實驗室應定期參與外部質量評估。
(責任編輯:佳學基因)