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【佳學(xué)基因檢測(cè)】分子診斷與基因檢測(cè)中的DNA恒溫?cái)U(kuò)增技術(shù)及等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)

【佳學(xué)基因】分子診斷與基因檢測(cè)中的DNA恒溫?cái)U(kuò)增技術(shù)及等溫?cái)U(kuò)增技術(shù) 分子診斷與基因檢測(cè)兩個(gè)重要考核指標(biāo)是檢測(cè)的靈敏性和特異性。PCR是使用賊為廣泛的DNA、RNA序列復(fù)制技術(shù),以其靈敏性、特異性得到廣泛應(yīng)用,然而PCR需要反復(fù)的熱變性,無(wú)法擺脫依賴儀器設(shè)備的局限,從而限制了其在臨床現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)中的應(yīng)用。 自20世紀(jì)90年代初,很多實(shí)驗(yàn)室開始發(fā)展無(wú)需熱變性的恒溫?cái)U(kuò)增技

佳學(xué)基因檢測(cè)】分子診斷與基因檢測(cè)中的DNA恒溫?cái)U(kuò)增技術(shù)及等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)

 

分子診斷與基因檢測(cè)兩個(gè)重要考核指標(biāo)是檢測(cè)的靈敏性和特異性。PCR是使用賊為廣泛的DNA、RNA序列復(fù)制技術(shù),以其靈敏性、特異性得到廣泛應(yīng)用,然而PCR需要反復(fù)的熱變性,無(wú)法擺脫依賴儀器設(shè)備的局限,從而限制了其在臨床現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)中的應(yīng)用。

自20世紀(jì)90年代初,很多實(shí)驗(yàn)室開始發(fā)展無(wú)需熱變性的恒溫?cái)U(kuò)增技術(shù),現(xiàn)已開發(fā)出環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)、鏈替代等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)、滾環(huán)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)、依賴核酸序列等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)等技術(shù)。

環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增

環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(loop-mediated isothermal amplification,LAMP)是由日本榮研公司的Notomi等于2000年首先提出來(lái)的新的核酸擴(kuò)增技術(shù)。

基于該技術(shù),榮研還曾和國(guó)內(nèi)某公司引起專利糾紛。

其擴(kuò)增原理是基于DNA在65℃左右處于動(dòng)態(tài)平衡狀態(tài),任何一個(gè)引物向雙鏈DNA的互補(bǔ)部位進(jìn)行堿基配對(duì)延伸時(shí),另一條鏈就會(huì)解離,變成單鏈。

DNA在此溫度下利用4條特異性引物依靠一種鏈置換DNA聚合酶,使鏈置換DNA的合成不停地自我循環(huán)。

先確定目標(biāo)基因上的6個(gè)特異性區(qū)域F3、F2、F1、B1、B2、B3,然后依據(jù)這6 個(gè)特異性區(qū)域設(shè)計(jì)4條引物(如下圖):

正向內(nèi)引物(forwardinner primer,F(xiàn)IP),由F1c 和F2 組成。

反向內(nèi)引物(backwardinner primer,BIP),由B1c 和B2 組成,中間均以TTTT作為間隔。

外引物F3、B3 分別由目的基因上的F3、B3 區(qū)域組成。

在LAMP 反應(yīng)體系中,內(nèi)引物的濃度幾倍于外引物的濃度。內(nèi)引物先與模板鏈結(jié)合合成互補(bǔ)鏈,形成DNA雙鏈。隨后外引物再與該模板鏈結(jié)合,形成DNA雙鏈,在BstDNA 聚合酶的作用下,釋放出由內(nèi)引物合成的互補(bǔ)鏈,該互補(bǔ)鏈經(jīng)過一系列反應(yīng)賊終形成具有啞鈴結(jié)構(gòu)的DNA單鏈。

以啞鈴結(jié)構(gòu)DNA單鏈自身為模板不斷形成一端開口的過渡性莖環(huán)結(jié)構(gòu)DNA,由內(nèi)外引物引導(dǎo)過渡性莖環(huán)結(jié)構(gòu)DNA不斷發(fā)生鏈置換延伸反應(yīng),賊后形成具有多個(gè)莖環(huán)結(jié)構(gòu)的長(zhǎng)度不一的DNA混合物。

環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增的優(yōu)勢(shì)與不足

LAMP 的優(yōu)勢(shì):

(1)擴(kuò)增效率高,能夠在1h內(nèi)有效的擴(kuò)增1-10個(gè)拷貝的目的基因,擴(kuò)增效率為普通PCR的10 倍-100 倍。

(2)反應(yīng)時(shí)間短,特異性強(qiáng),不需要特殊的設(shè)備。

LAMP 的不足:

(1)對(duì)引物的要求特別高。

(2)擴(kuò)增產(chǎn)物不能用于克隆測(cè)序,只能用于判斷。

(3)由于其敏感性強(qiáng),容易形成氣溶膠,造成假陽(yáng)性,影響檢測(cè)結(jié)果。

鏈置換擴(kuò)增

鏈置換擴(kuò)增(strand displacement amplification,SDA)是美國(guó)學(xué)者Walker于1992年新穎提出的一種基于酶促反應(yīng)的DNA體外等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)。

SDA 的基本系統(tǒng)包括一種限制性核酸內(nèi)切酶、一種具有鏈置換活性的DNA聚合酶、兩對(duì)引物、dNTP以及鈣、鎂離子和緩沖系統(tǒng)。

鏈置換擴(kuò)增其原理是基于在靶DNA兩端帶有被化學(xué)修飾的限制性核酸內(nèi)切酶識(shí)別序列,核酸內(nèi)切酶在其識(shí)別位點(diǎn)將鏈DNA打開缺口,DNA聚合酶延伸缺口3’端并替換下一條DNA鏈。

被替換下來(lái)的DNA單鏈可與引物結(jié)合并被DNA聚合酶延伸成雙鏈。該過程不斷反復(fù)進(jìn)行,使靶序列被高效擴(kuò)增。

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鏈置換擴(kuò)增技術(shù)的優(yōu)勢(shì)與不足

SDA 的優(yōu)點(diǎn):

擴(kuò)增效率高,反應(yīng)時(shí)間短,特異性強(qiáng),不需要特殊的設(shè)備。

SDA 的不足:

產(chǎn)物不均一,在SDA循環(huán)中總要產(chǎn)生一些單、雙鏈產(chǎn)物,用電泳法檢測(cè)時(shí)必然會(huì)出現(xiàn)拖尾現(xiàn)象。

滾環(huán)核酸擴(kuò)增

滾環(huán)核酸擴(kuò)增(rolling circle amplification, RCA)是通過借鑒病原生物體滾環(huán)復(fù)制DNA的方式而提出的,指在恒溫下以單鏈環(huán)狀DNA為模板,在特殊的DNA聚合酶(比如Phi29)的作用下,進(jìn)行滾環(huán)式DNA合成,實(shí)現(xiàn)目標(biāo)基因的擴(kuò)增。

RCA可分為線性擴(kuò)增與指數(shù)擴(kuò)增兩種形式,線性RCA的效率可達(dá)到105倍,而指數(shù)RCA的效率可達(dá)到109倍。

簡(jiǎn)單區(qū)分,如下圖,線性擴(kuò)增a只用1條引物,指數(shù)擴(kuò)增b則有2條引物。

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線性RCA 又稱為單引物RCA,一條引物結(jié)合到環(huán)狀DNA上,在DNA 聚合酶作用下被延伸,產(chǎn)物為單環(huán)長(zhǎng)度數(shù)千倍的大量重復(fù)序列的線狀單鏈。

由于線性RCA的產(chǎn)物始終連接在起始引物上,所以信號(hào)易于固定是它的一大優(yōu)勢(shì)。

指數(shù)RCA,也被稱作超分支擴(kuò)增HRCA(Hyper branched RCA),在指數(shù)RCA中,一條引物擴(kuò)增出RCA產(chǎn)物,第二條引物與RCA產(chǎn)物雜化并延伸,置換已經(jīng)結(jié)合在RCA產(chǎn)物上的下游引物延伸鏈,反復(fù)進(jìn)行延伸和置換,產(chǎn)生樹狀的RCA擴(kuò)增產(chǎn)物。

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以4BaseBio公司的TruePrime滾環(huán)擴(kuò)增試劑盒為例,使用TthPrimPol引物酶和Phi29DNA聚合酶,實(shí)現(xiàn)了無(wú)需添加引物即可進(jìn)行擴(kuò)增。

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滾環(huán)核酸擴(kuò)增的優(yōu)勢(shì)與不足

RCA 的優(yōu)勢(shì):

靈敏度高,特異性好,易操作。

RCA 的不足:

信號(hào)檢測(cè)時(shí)的背景問題。在RCA反應(yīng)過程中未成環(huán)的鎖式探針和未結(jié)合探針的模板DNA或者RNA 可能產(chǎn)生一些背景信號(hào)。

依賴核酸序列的擴(kuò)增技術(shù)

依賴核酸序列的擴(kuò)增技術(shù)(nucleicacid sequence-based amplification, NASBA)是在PCR基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的一種新技術(shù),是由1對(duì)帶有T7啟動(dòng)子序列的引物引導(dǎo)的連續(xù)、等溫的核酸擴(kuò)增技術(shù),可以在2h左右將模板RNA擴(kuò)增約109倍,比常規(guī)PCR法高1000倍,不需特殊的儀器。

該技術(shù)一出現(xiàn)就被用于疾病的快速診斷,目前有不少公司的RNA檢測(cè)試劑盒都用此方法。

盡管RNA的擴(kuò)增也可以使用反轉(zhuǎn)錄PCR技術(shù),NASBA相比則有自己的優(yōu)勢(shì):可以在相對(duì)恒溫的條件下進(jìn)行,相對(duì)傳統(tǒng)的PCR技術(shù)更為穩(wěn)定、正確。

反應(yīng)在41攝氏度下,需要AMV(avian myeloblastosis virus)逆轉(zhuǎn)錄酶、RNA酶H、T7 RNA聚合酶和一對(duì)引物來(lái)完成。

其過程主要包括:

正向引物包含T7啟動(dòng)子互補(bǔ)序列,反應(yīng)過程中正向引物與RNA鏈結(jié)合,由AMV酶催化形成DNA-RNA雙鏈。

RNA酶H消化雜交雙鏈中的RNA,保留DNA單鏈。

在反向引物與AMV酶的作用下形成含有T7啟動(dòng)子序列的DNA雙鏈。

在T7 RNA聚合酶的作用下完成轉(zhuǎn)錄過程,產(chǎn)生大量目的RNA。

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NASBA的優(yōu)勢(shì):

(1)它的引物上帶有T7啟動(dòng)子序列,而外來(lái)雙鏈DNA無(wú)T7啟動(dòng)子序列,不可能被擴(kuò)增,因此該技術(shù)具有較高的特異性和靈敏度。

(2)NASBA將反轉(zhuǎn)錄過程直接合并到擴(kuò)增反應(yīng)中,縮短了反應(yīng)時(shí)間。

NASBA的劣勢(shì):

(1)反應(yīng)成分比較復(fù)雜。

(2)需要3種酶使得反應(yīng)成本較高。

 

(責(zé)任編輯:佳學(xué)基因)
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